Caracterización de comunidades bacterianas del suelo en áreas de mayor conservación de antiguos campos elevados del predio “El Bosque”

dc.contributor.advisorRodríguez Saza, Freddy
dc.contributor.advisorGarcía Caycedo, Luz Andrea
dc.contributor.authorPatiño López, Angela María
dc.contributor.orcidRodríguez Saza, Freddy [0000-0001-9709-4258]
dc.contributor.orcidGarcía Caycedo, Luz Andrea [0009-0006-6574-2277]
dc.date.accessioned2025-09-29T16:23:32Z
dc.date.available2025-09-29T16:23:32Z
dc.date.created2025-08-25
dc.descriptionEn la Sabana de Bogotá se encuentran vestigios de sistemas hidráulicos de cultivo desarrollados por las comunidades prehispánicas que habitaron este territorio. Estos sistemas se conformaban de camellones y canales, y permitían la convivencia y aprovechamiento de estas poblaciones con el agua por la modificación del paisaje mientras utilizaban el suelo para la agricultura. El éxito de estas estructuras fue tal que permitió su sostenimiento y crecimiento durante cientos de años, hasta la llegada de los españoles, cuando fueron abandonadas. Para los camellones y canales se han realizados estudios a nivel edafológico, pero no a nivel microbiológico. En este estudio se realiza una caracterización bacteriana en los camellones, por medio de recuperación, aislamiento e identificación en medios de cultivo, complementados con un análisis metagenómico. Los resultados dan cuenta de la alta fertilidad de los suelos en estas estructuras, además de diversidad en las especies encontradas y equilibrio en los grupos funcionales
dc.description.abstractIn the Bogotá Savanna, there are remnants of hydraulic farming systems developed by the pre-Hispanic communities that inhabited this territory. These systems, composed of raised fields and canals, enabled these populations to coexist with and harness water resources by modifying the landscape while using the soil for agriculture. The success of these structures was such that they supported the communities’ subsistence and growth for hundreds of years, until the arrival of the Spanish, when they were abandoned. Studies on these raised fields and canals have been carried out at the edaphological level, but not at the microbiological level. In this study, a bacterial characterization of the raised fields was conducted through recovery, isolation, and identification in culture media, complemented by a metagenomic analysis. The results reveal the high fertility of the soils in these structures, as well as the diversity of species found and the balance among functional groups.
dc.description.sponsorshipArqueología y Genética S.A.S
dc.format.mimetypepdf
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11349/99312
dc.language.isospa
dc.publisherUniversidad Distrital Francisco José de Caldas
dc.relation.referencesAlijani, Z., Amini, J., Ashengroph, M., & Bahramnejad, B. (2019). Antifungal activity of volatile compounds produced by Staphylococcus sciuri strain MarR44 and its potential for the biocontrol of Colletotrichum nymphaeae, causal agent strawberry anthracnose. International Journal of Food Microbiology, 307, 108276. https://doi.org/10.1016/J.IJFOODMICRO.2019.108276 Boada Rivas, A. M. (2006). Patrones de asentamiento regional y sistemas de agricultura intensiva en Cota y Suba, Sabana de Bogotá (Colombia). Bogotá: Fundación de Investigaciones Arqueológicas Nacionales, Banco de La República. https://cir.nii.ac.jp/crid/1130282270451604480 Argilagos, G. B., & Torrens, H. R. (2007). La cápsula bacteriana, algo más que una estructura no esencial (Artículo de revisión). Rev. Prod. Anim, 20(1), 69–80. Barillot, C. D. C., Sarde, C.-O., Bert, V., Tarnaud, E., & Cochet, N. (2013). A standardized method for the sampling of rhizosphere and rhizoplan soil bacteria associated to a herbaceous root system. Annals of Microbiology, 63, 471–476. https://doi.org/10.1007/s13213-012-0491-y Beltrán Pineda, M. E., Rocha Gil, Z. E., Bernal Figueroa, A. A., & Pita Morales, L. A. (2017). Microorganismos funcionales en suelos con y sin revegetalización en el municipio de Villa de Leyva, Boyacá. Colombia Forestal, 20(2), 158–170. https://doi.org/10.14483/udistrital.jour.colomb.for.2017.2.a05 Bhagat, S. A., & Kokitkar, S. S. (2021). Isolation and identification of bacteria with cellulose-degrading potential from soil and optimization of cellulase production. J. Appl. Biol. Biotechnol, 9(6), 154–161. https://doi.org/10.7324/JABB.2021.96020 Cabrera, M., & Ramírez, W. (2014). Restauración ecológica de los páramos de Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Caycedo Lozano, L., Ramírez, L. C. C., Suárez, D. M. T., Caycedo Lozano, L., Ramírez, L. C. C., & Suárez, D. M. T. (2021). Las bacterias, su nutrición y crecimiento: una mirada desde la química. Nova, 19(36), 49–94. https://doi.org/10.22490/24629448.5293 Cheng, C., Han, H., Wang, Y., Wang, R., He, L., & Sheng, X. (2020). Biochar and metal-immobilizing Serratia liquefaciens CL-1 synergistically reduced metal accumulation in wheat grains in a metal-contaminated soil. Science of The Total Environment, 740, 139972. https://doi.org/10.1016/J.SCITOTENV.2020.139972 Cheng, C., Nie, Z. W., He, L. Y., & Sheng, X. F. (2020). Rice-derived facultative endophytic Serratia liquefaciens F2 decreases rice grain arsenic accumulation in arsenic-polluted soil. Environmental Pollution, 259, 113832. https://doi.org/10.1016/J.ENVPOL.2019.113832 Cycoń, M., Zmijowska, A., Wójcik, M., & Piotrowska-Seget, Z. (2013). Biodegradation and bioremediation potential of diazinon-degrading Serratia marcescens to remove other organophosphorus pesticides from soils. Journal of Environmental Management, 117, 7–16. https://doi.org/10.1016/J.JENVMAN.2012.12.031 Davis, N. M., Proctor, Di. M., Holmes, S. P., Relman, D. A., & Callahan, B. J. (2018). Simple statistical identification and removal of contaminant sequences in marker-gene and metagenomics data. Microbiome, 6(1), 1–14. https://doi.org/10.1186/S40168-018-0605-2/FIGURES/6 De Blas Beorlegui, C., & García Rebollar, P. (1993). Tamaño de partícula de los forrajes en la alimentación de vacas lecheras y conejos. Bases fisiológicas y recomendaciones. Dobrovol’skaya, T. G., Zvyagintsev, D. G., Chernov, I. Y., Golovchenko, A. V., Zenova, G. M., Lysak, L. V., Manucharova, N. A., Marfenina, O. E., Polyanskaya, L. M., Stepanov, A. L., & Umarov, M. M. (2015). The role of microorganisms in the ecological functions of soils. Eurasian Soil Science, 48(9). https://doi.org/10.1134/S1064229315090033 Dommain, R., Andama, M., McDonough, M. M., Prado, N. A., Goldhammer, T., Potts, R., Maldonado, J. E., Nkurunungi, J. B., & Campana, M. G. (2020). The challenges of reconstructing tropical biodiversity with sedimentary ancient DNA: A 2200-year-long metagenomic record from Bwindi impenetrable forest, Uganda. Frontiers in Ecology and Evolution, 8, 218. https://doi.org/10.3389/fevo.2020.00218 Durán Castiblanco, M., & Zapata Herazo, W. G. (2020). Evaluación de la biodiversidad fúngica en suelos de la reserva natural banco totumo-Bijibana (municipio de Repelón) y el humedal el Limón (corregimiento de las Compuertas-municipio de Manat\’\i) en el departamento del Atlántico. Repositorio Universidad de La Costa. Dutta, A., Ghosh, S., Choudhury, J. D., Mahansaria, R., Roy, M., Ghosh, A. K., Roychowdhury, T., & Mukherjee, J. (2017). Isolation of indigenous Staphylococcus sciuri from chromium-contaminated paddy field and its application for reduction of Cr(VI) in rice plants cultivated in pots. Bioremediation Journal, 21(1), 30–37. https://doi.org/10.1080/10889868.2017.1282935 Edwin, N. R., Fitzpatrick, A. H., Brennan, F., Abram, F., & O’Sullivan, O. (2024). An in-depth evaluation of metagenomic classifiers for soil microbiomes. Environmental Microbiome, 19(1), 1–17. https://doi.org/10.1186/S40793-024-00561-W/FIGURES/6 Estupiñán, C. P., Ortega, R. S., Márquez-Sánchez, F., & Romero, A. V. (2021). Soberan\’\ia alimentaria desde la pol\’\itica pública y sus argumentos: Food sovereignty from public policy and its arguments. Evista Científica Ecociencia, 8, 79–93. https://doi.org/10.21855/ecociencia.80.635 Fadhil, L., Kadim, A., & Mahdi, A. (2014). Production of Chitinase by Serratia marcescens from Soil and Its Antifungal Activity. Journal of Natural Sciences Research Www.Iiste.Org ISSN, 4(8). www.iiste.org Fajingbesi, A., Anzaku, A., … M. A.-J. C. P. L. M., & 2018, undefined. (2018). Production of protease enzyme from fish guts using Pseudomonas fluorescens, Enterobacter cloacae and Bacillus megaterium. J Clin Path Lab Med., 2(1). https://www.researchgate.net/profile/Akwashiki-Ombugadu/publication/337002108_Anzaku_et_al_JAN_2018/links/5dbf5efa299bf1a47b11c858/Anzaku-et-al-JAN-2018.pdf Fashola, M. O., Ashade, A. O., Opere, B. O., Dawodu, T. B., Anagun, O. S., Semako, S. D., & Obayori, O. S. (2024). Degradation of Diesel by Staphylococcus sciuri Strain XB1 Isolated from a Dumpsite in Lagos State, Nigeria. Nigerian Journal of Microbiology, 38(1). https://www.researchgate.net/profile/Olajide-Anagun/publication/390428316_Degradation_of_Diesel_by_Staphylococcus_sciuri_Strain_XB1_Isolated_from_a_Dumpsite_in_Lagos_State_Nigeria/links/67ed6cd2e8041142a15ec005/Degradation-of-Diesel-by-Staphylococcus-sciuri-Strain-XB1-Isolated-from-a-Dumpsite-in-Lagos-State-Nigeria.pdf Fatoba, D. O., Abia, A. L. K., Amoako, D. G., & Essack, S. Y. (2021). Rethinking manure application: Increase in multidrug-resistant enterococcus spp. in agricultural soil following chicken litter application. Microorganisms, 9(5), 885. https://doi.org/10.3390/MICROORGANISMS9050885/S1 Galan-Madruga, D., Diaz-Lopez, G., Sanchez Iñigo, F. J., Aguayo Balsas, S. M., Lucena-Lozano, M. A., Fernandez-Patier, R., & others. (2018). Metodolog\’\ia para la Toma de Muestra de Microorganismos Altamente Patógenos en las Matrices Ambientales Aire, Agua y Suelo/Sedimento. Instituto de Salud Carlos III (ISCIII). Centro Nacional de Sanidad Ambiental. Garrity, G. (2007). Bergey’s manual® of systematic bacteriology: volume 2: the Proteobacteria, part B: the Gammaproteobacteria. https://books.google.com/books?hl=es&lr=&id=5zSYmcq0GdgC&oi=fnd&pg=PR14&ots=fmh-MAj_Mq&sig=b4I78YD-tbqj_SW2IghLq7o4dGE Gelvez Pardo, I. M., Moreno Rodríguez, J. M., & Santos Díaz, A. M. (2020). Guía de Muestreo para Análisis Microbiológico. AGROSAVIA. Gong, A., Wang, G., Sun, Y., Song, M., Dimuna, C., Gao, Z., Wang, H., & Yang, P. (2022). Dual activity of Serratia marcescens Pt-3 in phosphate-solubilizing and production of antifungal volatiles. BMC Microbiology, 22(1), 1–11. https://doi.org/10.1186/S12866-021-02434-5/FIGURES/7 Hameeda, B., Harini, G., Rupela, O. P., Wani, S. P., & Reddy, G. (2008). Growth promotion of maize by phosphate-solubilizing bacteria isolated from composts and macrofauna. Microbiological Research, 163(2), 234–242. https://doi.org/10.1016/J.MICRES.2006.05.009 Herrera Wassilowsky, A. C. (2011). La recuperación de tecnologías indígenas: arqueología, tecnología y desarrollo en los Andes. Ediciones Uniandes. Jamil, N., Hyder, S., Valipour, M., Yasir, M., Iqbal, R., Roy, R., Zafar, M. U., & Ahmed, A. (2022). Evaluation of the Bioremediation Potential of Staphlococcus lentus Inoculations of Plants as a Promising Strategy Used to Attenuate Chromium Toxicity. Sustainability 2022, Vol. 14, Page 13056, 14(20), 13056. https://doi.org/10.3390/SU142013056 Jiménez, D. J., Montaña, J. S., & Mart\’\inez, M. M. (2011). Characterization of free nitrogen fixing bacteria of the genus Azotobacter in organic vegetable-grown Colombian soils. Brazilian Journal of Microbiology, 42, 846–858. Jónsson, H., Ginolhac, A., Schubert, M., Johnson, P. L. F., & Orlando, L. (2013). mapDamage2.0: fast approximate Bayesian estimates of ancient DNA damage parameters. Bioinformatics, 29(13), 1682–1684. https://doi.org/10.1093/BIOINFORMATICS/BTT193 Jung, B. K., Ibal, J. C., Pham, H. Q., Kim, M. C., Park, G. S., Hong, S. J., Jo, H. W., Park, C. E., Choi, S. D., Jung, Y., Tagele, S. B., & Shin, J. H. (2020). Quorum Sensing System Affects the Plant Growth Promotion Traits of Serratia fonticola GS2. Frontiers in Microbiology, 11, 536865. https://doi.org/10.3389/FMICB.2020.536865/BIBTEX Kamrun Nahar, M., Nazmul Haque, M., Kumar Paul, G., Islam, S., Abu Saleh, M., Salah Uddin, M., & Zaman, S. (2022). Bacteria isolated from cultivated soil after liming promote seed germination and seedling growth of crop plants. Current Research in Biotechnology, 4, 21–31. https://doi.org/10.1016/J.CRBIOT.2021.12.001 Knights, D., Kuczynski, J., Charlson, E. S., Zaneveld, J., Mozer, M. C., Collman, R. G., Bushman, F. D., Knight, R., & Kelley, S. T. (2011). Bayesian community-wide culture-independent microbial source tracking. Nature Methods 2011 8:9, 8(9), 761–763. https://doi.org/10.1038/nmeth.1650 Koschny Castro, M. E. (2020). Evaluación de la producción de celulasas mediante un proceso de fermentación en medio sólido, empleando como sustrato residuos de zanahoria (Daucus Carota) y de ma\’\iz (Zea Mays). Lavado, R. S., Alvarez, R., Correa, O. S., D\’\iaz Zorita, M., Fernández Canigia, M. V., García F. O., González Sanjuan, M. F., Herrera, J. M., Perillo, V. L., Renis, S., & others. (2016). Sustentabilidad de agrosistemas y el uso de fertilizantes. Instituto de Investigaciones en Biociencias Agrícolas y Ambientales. Llamas, B., Valverde, G., Fehren-Schmitz, L., Weyrich, L. S., Cooper, A., & Haak, W. (2016). From the field to the laboratory: Controlling DNA contamination in human ancient DNA research in the high-throughput sequencing era. STAR: Science & Technology of Archaeological Research, 3(1), 1–14. https://doi.org/10.1080/20548923.2016.1258824 Loredo -Osti, C., López-Reyes, L., & Espinosa-Victoria, D. (2004). Bacterias promotoras del crecimiento vegetal asociadas con gramíneas: una revisión. Lu, J., Breitwieser, F. P., Thielen, P., & Salzberg, S. L. (2017). Bracken: Estimating species abundance in metagenomics data. PeerJ Computer Science, 2017(1), e104. https://doi.org/10.7717/PEERJ-CS.104/SUPP-5 Lv, L., Luo, J., Ahmed, T., Zaki, H. E. M., Tian, Y., Shahid, M. S., Chen, J., & Li, B. (2022). Beneficial Effect and Potential Risk of Pantoea on Rice Production. Plants 2022, Vol. 11, Page 2608, 11(19), 2608. https://doi.org/10.3390/PLANTS11192608 Ma, H. Y., Yang, B., Wang, H. W., Yang, Q. Y., & Dai, C. C. (2016). Application of Serratia marcescens RZ-21 significantly enhances peanut yield and remediates continuously cropped peanut soil. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(1), 245–253. https://doi.org/10.1002/JSFA.7087 Merchán, A. V., Ruiz-Moyano, S., Hernández, M. V., Martín, A., Lorenzo, M. J., & Benito, M. J. (2022). Characterization of autochthonal Hafnia spp. strains isolated from Spanish soft raw ewe’s milk PDO cheeses to be used as adjunct culture. International Journal of Food Microbiology, 373, 109703. https://doi.org/10.1016/J.IJFOODMICRO.2022.109703 Michail, G., Reizopoulou, A., & Vagelas, I. (2022). Evaluation of the biocontrol efficacy of Serratia proteamaculans and S. liquefaciens isolated from bats guano pile from a subterrestrial cave (Greece). Agricultural Biology, 57(3). https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.3.566eng Mishra, S., & Behera, N. (2008). Amylase activity of a starch degrading bacteria isolated from soil receiving kitchen wastes. African Journal of Biotechnology, 7(18). Montaño, N. M., Sandoval-Pérez, A. L., Nava-Mendoza, M., Sánchez-Yañez, J. M., & Garc\’\ia-Oliva, F. (2013). Variación espacial y estacional de grupos funcionales de bacterias cultivables del suelo de un bosque tropical seco en México. Revista de Biolog\’\ia Tropical, 61(1), 439–453. Mora Delgado, J., Silva Parra, A., & Escobar Escobar, N. (2019a). Bioindicadores en suelos y abonos orgánicos. Ibagué: Sello Editorial Universidad del Tolima, 2019. Mora Delgado, Jairo., Silva Parra, A., & Escobar Escobar, N. (2019b). Bioindicadores en suelos y abonos orgánicos. Sello Editorial Universidad del Tolima. https://www.researchgate.net/publication/337567999_BIOINDICADORES_EN_SUELOS_Y_ABONOS_ORGANICOS Moreno, X., Ventura, M., Panizo, M. M., Garcés, M. F., Moreno, X., Ventura, M., Panizo, M. M., & Garcés, M. F. (2023). Evaluación de la formación de biopelículas en aislamientos bacterianos y fúngicos por el método semicuantitativo de microtitulación con cristal violeta y el cualitativo de agar con rojo Congo. Biomédica, 43, 77–88. https://doi.org/10.7705/BIOMEDICA.6732 Nasr-Eldin, M. A., Gamal, E., Hazza, M., & Abo-Elmaaty, S. A. (2023). Isolation, characterization, and application of lytic bacteriophages for controlling Enterobacter cloacae complex (ECC) in pasteurized milk and yogurt. Folia Microbiologica, 68(6), 911–924. https://doi.org/10.1007/S12223-023-01059-7/FIGURES/8 Ortiz Paucay, L. P. (2016). Biodiversidad fúngica en el suelo del bosque protector Aguarongo, provincia del Azuay-Ecuador. Universidad Politécnica Salesiana. Otero Jiménez, V. (2011). Aislamiento, Selección e Identificación de Actinomicetos, Bacterias Fotosintéticas No Sulfurosas y Bacterias Ácido Lácticas con Potencial Biofertilizante, a Partir de Suelos Asociados al Cultivo de Plátano en la Costa Atlántica Colombiana. Universidad Nacional de Colombia. Ovalle Másmela, J. C., Botero Rute, L. M., Herrera León, R. F., Rodríguez Villamizar, F., & Jiménez Sabogal, H. R. (2021). Colección de Microorganismos con Interés en Nutrición Animal (CMINA). Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA. Pérez, V., Liu, Y., Hengst, M. B., & Weyrich, L. S. (2022). A case study for the recovery of authentic microbial ancient DNA from soil samples. Microorganisms, 10(8), 1623. https://doi.org/10.3390/microorganisms10081623 Powlson, D. S., Hirsch, P. R., & Brookes, P. C. (2001). The role of soil microorganisms in soil organic matter conservation in the tropics. Nutrient Cycling in Agroecosystems, 61(1–2). https://doi.org/10.1023/A:1013338028454 Pulido Londoño, A. E., & Pinto Moreno, D. A. (2016). Determinación del funcionamiento hidráulico de los sistemas de campos elevados de la cultura muisca en las llanuras inundables de la Sabana de Bogotá. Repositorio Universidad Distrital Francisco José de Caldas. Reyes, I., & Valery, A. (2007). Efecto de la fertilidad del suelo sobre la microbiota y la promoción del crecimiento del ma\’\iz (Zea mays L.) con Azotobacter spp. Bioagro, 19(3), 117–126. Rivas, A. M. (2018). ¿Quién controlaba las tierras y el trabajo agrícola en el cacicazgo muisca? Latin American Antiquity, 1(29), 91–111. Rodríguez Gallo, L. (2019). La construcción del paisaje agr\’\icola prehispánico en los Andes colombianos: el caso de la Sabana de Bogotá. SPAL, 28 (1), 193-215. https://doi.org/10.12795/spal.2019.i28.09 Rodríguez Gallo, L. (2021). Permanencias y transformaciones: el territorio muisca en la Sabana de Bogotá en la segunda mitad del siglo XVI. Anuario Colombiano de Historia Social y de La Cultura, 48(2), 363–398. https://doi.org/10.15446/achsc.v48n2.95666 Sánchez Castelbianco, E. M., Heredia Martin, J. P., Buitrago Morales, S. M., & Medina Rodriguez, J. P. (2020). Aislamiento e identificación de microorganismos potencialmente amilol\’\iticos y celulol\’\iticos de suelos de humedales de Bogotá. Revista Colombiana de Biotecnolog\’\ia, 22(1), 36–44. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v22n1.71278 Schulz, S., Brankatschk, R., Dümig, A., Kögel-Knabner, I., Schloter, M., & Zeyer, J. (2013). The role of microorganisms at different stages of ecosystem development for soil formation. Biogeosciences, 10(6), 3983–3996. https://doi.org/10.5194/BG-10-3983-2013 Sebastian W. Przemieniecki, Tomasz P. Kurowski, Karol Kotlarz, Krzysztof Krawczyk, Marta Damszel, & Anna Karwowska. (2016). Plant growth promoting properties of Serratia fonticola ART-8 and Pseudomonas putida ART-9 and their effect on the growth of spring wheat (Triticum aestivum. Environmental Biotechnology, 12(2). https://bibliotekanauki.pl/articles/363300.pdf Suman, A., Shukla, L., Marag, P. S., Verma, P., Gond, S., & Prasad, J. S. (2020). Potential use of plant colonizing Pantoea as generic plant growth promoting bacteria for cereal crops. Jeb.Co.InA Suman, L Shukla, PS Marag, P Verma, S Gond, JS PrasadJournal of Environmental Biology, 2020•jeb.Co.In, 41, 987–994. https://doi.org/10.22438/jeb/41/5/MRN-1250 Sun, S., & Badgley, B. D. (2019). Changes in microbial functional genes within the soil metagenome during forest ecosystem restoration. Soil Biology and Biochemistry, 135, 163–172. https://doi.org/10.1016/J.SOILBIO.2019.05.004 Tate, R. L. (2021). Soil Microbiology Third Edition. http://www.wiley.com/go/permissions. Tigrero-Zapata, G. J., Vásconez-Montúfar, G. H., Ferrer-Sánchez, Y., Cedeño-Moreira, A. V., Nieto-Cañarte, C. A., & Abasolo-Pacheco, F. (2022). Identification of the agricultural potential of soils in the Ecuadorian Amazon, from physical-chemical, microbiological and environmental variables. Terra Latinoamericana, 40. https://doi.org/10.28940/TERRA.V40I0.1294 Valdés Jimenez, Y. del C. (2022). Metagenómica de suelos acrisoles háplico de Panamá. Universidad de Panamá. Valdez, F. (2006). Agricultura ancestral camellones y albarradas: contexto social, usos y retos del passado y del presente: coloquio agricultura prehispánica sistemas basados en el drenaje y en la elevación de los suelos cultivados (Issue 3). Editorial Abya Yala. Vallejo-Quintero, V. E. (2013). Importancia y utilidad de la evaluación de la calidad de suelos mediante el componente microbiano: experiencias en sistemas silvopastoriles. Colombia Forestal, 16(1), 83–99. Vos, P., Garrity, G., Jones, D., Krieg, N., & Ludwig, W. (2009). Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology Volume 3: The Firmicutes. In Springer (Vol. 3). https://link.springer.com/book/10.1007/978-0-387-68489-5 Walterson, A. M., & Stavrinides, J. (2015). Pantoea: insights into a highly versatile and diverse genus within the Enterobacteriaceae. FEMS Microbiology Reviews, 39(6), 968–984. https://doi.org/10.1093/FEMSRE/FUV027 Werner, A. (2014). Horizontal gene transfer among bacteria and its role in biological evolution. Life, 4(2), 217–224. https://doi.org/10.3390/life4020217 Wood, D. E., Lu, J., & Langmead, B. (2019). Improved metagenomic analysis with Kraken 2. Genome Biology, 20(1), 1–13. https://doi.org/10.1186/S13059-019-1891-0/FIGURES/2 Zhu, Y., Sang, X., Li, X., Zhang, Y., Hao, H., Bi, J., Zhang, G., & Hou, H. (2020). Effect of quorum sensing and quorum sensing inhibitors on the expression of serine protease gene in Hafnia alvei H4. Applied Microbiology and Biotechnology, 104(17), 7457–7465. https://doi.org/10.1007/S00253-020-10730-9
dc.rights.accesoAbierto (Texto Completo)
dc.rights.accessrightsOpenAccess
dc.subjectCamellones
dc.subjectSabana de Bogotá
dc.subjectBacterias
dc.subjectMetagenómica
dc.subjectMicrobiología
dc.subjectSuelo
dc.subject.keywordRaised fields
dc.subject.keywordBogota Savanna
dc.subject.keywordBacteria
dc.subject.keywordMetagenomic
dc.subject.keywordMicrobiology
dc.subject.keywordSoil
dc.subject.lembBiología -- Tesis y disertaciones académicas
dc.subject.lembMicrobiología
dc.subject.lembSuelos
dc.subject.lembBacterias
dc.subject.lembEdafología -- Investigación
dc.subject.lembBiodiversidad
dc.titleCaracterización de comunidades bacterianas del suelo en áreas de mayor conservación de antiguos campos elevados del predio “El Bosque”
dc.title.titleenglish"Characterization of Soil Bacterial Communities in Highly Conserved Areas of Ancient Raised Fields at the 'El Bosque' property"
dc.typebachelorThesis
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.degreeInvestigación-Innovación
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesis

Archivos

Bloque original

Mostrando 1 - 2 de 2
No hay miniatura disponible
Nombre:
PatiñoLópezAngelaMaría2025.pdf
Tamaño:
3.14 MB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descripción:
Trabajo de grado
No hay miniatura disponible
Nombre:
Licencia de uso y publicacion .docx
Tamaño:
277.99 KB
Formato:
Microsoft Word XML

Bloque de licencias

Mostrando 1 - 1 de 1
No hay miniatura disponible
Nombre:
license.txt
Tamaño:
7 KB
Formato:
Item-specific license agreed upon to submission
Descripción:

Colecciones